流式細胞術檢測細胞周期

1。實驗原理  

     用流式細胞儀檢測細胞周期，通常用碘化丙啶（propidium iodide，PI）染細胞核。PI在一定波長的光下發(fā)出熒光，其強度與DNA含量成正比。通過流式細胞儀分析各時期的細胞百分數，可檢測細胞的增殖、凋亡。

2。流式細胞儀檢測A549細胞周期步驟  

     收集對數生長期細胞，計數，以(1~5)×105/孔接種于6孔板，置37℃，5％CO2條件下培養(yǎng)過夜，使細胞貼壁。次日更換培養(yǎng)液，各孔分別加入含有0、80、400、2000、10000 mg/L不同濃度茶氨酸的細胞培養(yǎng)液2 mL/孔，繼續(xù)常規(guī)培養(yǎng)；每24 h同法換液一次。每個濃度設3個重復。  48 h后，中止培養(yǎng)，胰酶消化后，收集細胞于流式管1000 r/min離心5min，棄上，冷PBS洗滌細胞3次，離心去上清；  一邊震蕩一邊向細胞沉淀中加入70%預冷乙醇混勻，4℃固定18 h以上；離心，棄去乙醇上清，加入預冷的PBS洗沉淀1次，離心去上清；  加入RNA酶（50 mg/L）10 μL/孔和PI（50 mg/L）300 μL/孔，震蕩混勻。室溫、避光反應30 min；  流式細胞儀進行DNA檢測，用Modifit軟件分析各時相細胞周期的比例。